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解决方案:HPV-E6/E7 永生化人脑膜瘤细胞的建立、验证与风险控制全套流程

2025-09-01

背景痛点:原代脑膜瘤细胞体外“断崖式”衰老

WHO Ⅰ级脑膜瘤原代细胞在常规培养中 6–8 代即进入衰老期,β-半乳糖苷酶阳性率骤升至 80 % 以上,染色体端粒缩短至 4.2 kb。药物筛选、信号通路研究被迫中断,实验窗口期短,数据重复性差。

核心思路:HPV-E6/E7 双基因精准干预

E6 通过 E6-AP 介导 p53 泛素化降解,E7 与 pRb 口袋蛋白结合释放 E2F 转录因子,两条通路协同绕过 G1/S 关卡。相比 SV40T,HPV 系统对脑膜瘤细胞的转染效率更高(慢病毒 MOI 1.5 即可达到 85 % GFP 阳性),且不会引入额外的大 T 抗原表位,降低下游免疫实验干扰。

载体设计细节

  • 启动子:选择 1.2 kb 的 hTERT 启动子片段,仅在脑膜瘤细胞内有活性,避免旁分泌影响
  • 标签:E6/E7 下游插入 T2A-EGFP-P2A-Puro,荧光与抗性双标记,便于流式富集
  • 安全开关:两侧放置 loxP 位点,Cre 重组酶可在 48 h 内关闭表达,满足体内移植撤药需求

建立流程(实验室可直接复制)

  1. 原代培养:手术标本 2 h 内剪碎,0.2 % 胶原酶Ⅳ 37 °C 消化 30 min,70 μm 滤网过滤
  2. 慢病毒感染:细胞汇合度 60 % 时加入病毒上清 + 8 μg/mL Polybrene,离心感染 90 min,1000 ×g
  3. 筛选:48 h 后用 1 μg/mL Puromycin 连续筛选 7 d,每 2 d 换液
  4. 单克隆化:流式分选 EGFP 强阳性细胞 1 个/孔,96 孔板扩增
  5. 验证:
    • Western blot 确认 p53、pRb 表达量下降 > 90 %
    • TRAP-PCR 测端粒酶活性升高 20–30 倍
    • STR 与原始肿瘤 100 % 匹配

功能保留验证

  • 免疫表型:EMA、Vimentin、PR 阳性率保持 > 95 %;GFAP 阴性
  • 染色体:G 显带核型 46,XX/46,XY,22 号单体比例 < 2 %
  • 体外功能:划痕愈合率 35 %,Transwell 侵袭 180 ± 20 细胞/视野,与原代差异无统计学意义
  • 药物响应:米非司酮 IC?? 4.7 μM,羟基脲 IC?? 0.9 mM,与原代曲线重叠

风险控制与伦理要点

  • Cre-loxP 系统:体内移植前用 Ad-Cre 处理 48 h,E6/E7 切除后细胞周期回到正常,降低成瘤风险
  • 支原体与病毒残留:每 10 代 qPCR 检测 HPV 基因组拷贝数,确保无野生型病毒复制;支原体 Ct > 35
  • 伦理备案:医院伦理委员会批准编号需在论文材料与方法中公开,细胞库编号同步上传 Cellosaurus

常见故障排查

现象 可能原因 解决措施
筛选 7 d 仍大量死细胞 Puromycin 浓度过高 降至 0.5 μg/mL 并梯度验证
EGFP 阳性率 < 50 % 病毒滴度不足 浓缩病毒,MOI 提至 3–5
核型异常 > 5 % 单克隆过晚传代 P3 前完成核型鉴定并冻存
β-gal 阳性率反弹 E6/E7 表达衰减 重新转导或更换高拷贝整合株

配套试剂与耗材清单

  • 慢病毒包装:psPAX2 + pMD2.G + 目的质粒(三质粒体系)
  • 培养基:DMEM/F12 + 10 % FBS + 1 % NEAA + 2 mM GlutaMAX
  • 支原体检测:MycoSEQ qPCR Kit
  • Cre 重组:Ad-Cre 腺病毒 1 × 10^9 PFU/mL