操作前的准备工作直接影响分析结果的准确性。首先,检查试剂盒完整性:确认所有组件齐全,包括底物溶液、缓冲液和终止剂。试剂储存需遵循厂商说明,通常底物溶液在-20°C避光保存,缓冲液在4°C冷藏。样本处理是关键步骤:使用新鲜细胞裂解液或组织匀浆,避免反复冻融以防酶失活。样本浓度应调整至推荐范围(如0.5-2 mg/mL蛋白),使用BCA法测定蛋白含量以确保一致性。忽视这一步可能导致活性计算偏差,例如高浓度样本会饱和检测系统,产生假阳性结果。深度实践中,建议在冰上操作样本,减少酶降解,并记录每个样本的制备时间以追溯数据异常。
CAT活性分析的核心步骤需严格按顺序执行,以捕捉酶反应动力学。第一步,设置反应体系:在96孔板中,加入50 μL样本裂解液和100 μL底物溶液(含过氧化氢),启动反应。立即计时,反应在室温(25°C)进行2-5分钟,具体时间依据试剂盒说明调整。第二步,加入终止剂:快速注入50 μL终止液(如硫酸),停止反应并稳定颜色变化。第三步,比色测定:使用酶标仪在540 nm波长读取吸光度,空白对照用缓冲液代替样本。每个步骤需同步进行,避免批次间差异。深入解析中,反应时间控制至关重要——过短会低估活性,过长则可能因底物耗尽导致平台期。实验室经验表明,设置三重复孔并计算均值可减少误差至<5%,提高可重复性。
操作过程中的微小失误可能引发数据偏差,需针对性预防。常见问题包括试剂污染:确保所有移液器头无菌更换,避免交叉污染;温度波动影响显著,如在高于30°C环境操作会加速酶失活,建议使用恒温槽。另一个关键点是吸光度读取:仪器校准后需验证线性范围,超出范围时稀释样本重新测试。对于低活性样本,增加反应时间或样本量可提升灵敏度。深度案例中,用户反馈气泡干扰读数是高频问题——通过离心去除气泡或使用排泡剂可解决。此外,定期进行质量控制测试,用已知活性标准品验证试剂盒性能,确保每个批次一致性。
分析完成后,结果需基于标准曲线计算。CAT活性单位常定义为每分钟分解1 μmol过氧化氢的酶量(U/mg蛋白)。使用试剂盒提供的公式,将吸光度值代入标准曲线获得活性值。数据解读时,考虑样本背景:如细胞类型差异(肝细胞CAT活性较高),需对比对照组。优化建议包括优化反应条件:通过预实验确定最佳样本量和反应时间,避免浪费试剂。实际应用中,结合其他氧化应激指标(如SOD活性)可全面评估细胞状态,提升研究价值。