乙醇脱氢酶（ADH）是生物体内催化乙醇氧化为乙醛的关键酶，广泛存在于肝脏、植物、微生物等组织中。ADH活性检测在酒精代谢研究、毒理学评估、植物逆境生理及工业发酵监控中具有重要应用价值。掌握ADH活性检测的标准操作流程，有助于获得准确可靠的实验数据。本文将围绕ADH活性检测的操作使用展开，详细讲解实验准备、操作步骤、注意事项及常见问题处理。

实验前的准备工作

样本的采集与保存直接影响检测结果的准确性。动物组织样本应在冰上快速采集，避免酶活性降解。肝脏组织是ADH含量最丰富的样本，采集后立即液氮速冻，保存于-80℃。植物样本需液氮研磨后保存，避免反复冻融。

试剂的准备需严格按照实验方案进行。反应缓冲液通常含有Tris-HCl、NAD?、乙醇等成分，pH值调节至8.5-9.0之间。NAD?需避光保存，乙醇需使用高纯度试剂。显色剂如硝基蓝四唑（NBT）需现配现用。

仪器的校准是实验成功的基础。紫外分光光度计需提前预热30分钟，校准波长340nm。检查比色皿的清洁度和匹配性。恒温水浴锅设定至反应温度（通常为25℃或37℃），确保温度稳定。

样本处理与酶液制备

组织样本的研磨需在冰浴中进行。使用预冷的研钵和缓冲液，将组织研磨成匀浆。研磨过程中避免产热，必要时可间歇进行。研磨后4℃离心15分钟（12000g），取上清液作为酶液。

细胞样本的裂解需选择温和的方法。超声波破碎时设置适当的功率和时间，避免过度破碎导致酶失活。裂解液中加入适量的蛋白酶抑制剂，防止酶蛋白降解。裂解后同样离心取上清。

酶液的稀释需根据预实验结果确定。过高的酶浓度会导致反应过快，难以准确测定初始速率。过低的酶浓度则信号弱，误差大。通过系列稀释确定最佳酶浓度，使反应在3-5分钟内呈线性。

反应体系的构建与启动

反应体系各组分的添加顺序影响酶活性的表现。通常先加入缓冲液、NAD?和酶液，最后加入乙醇启动反应。底物启动法能够确保反应同步开始，便于比较不同样本的酶活性。

反应体积的设定需考虑检测仪器的灵敏度。分光光度法通常使用1mL或3mL的比色皿，反应体积相应调整。微量检测体系可使用96孔板，反应体积降至200μL，适合高通量筛选。

反应温度的控制需精确稳定。温度波动会导致酶活性变化，影响结果重现性。使用恒温水浴或带温控的分光光度计，确保反应在设定温度下进行。温度敏感型酶需严格控制温度变化范围。

数据记录与处理分析

吸光度变化的记录需及时准确。ADH催化乙醇氧化生成乙醛，同时NAD?还原为NADH，在340nm处有特征吸收峰。每30秒记录一次吸光度，持续3-5分钟，绘制吸光度-时间曲线。

初始速率的计算是数据分析的关键。取曲线初始线性部分的斜率作为反应速率，避免底物耗尽或产物抑制的影响。使用专业软件进行线性回归分析，计算相关系数确保线性良好。

酶活性的计算需考虑稀释倍数和反应条件。根据NADH的摩尔消光系数（6.22×103 L·mol?1·cm?1）计算酶活性单位。通常以每分钟生成1μmol NADH的酶量为一个活性单位（U）。

常见问题及处理方案

反应体系出现浑浊可能由于酶液中含有不溶物或缓冲液配制不当。离心去除不溶物，检查缓冲液的pH和离子强度。必要时过滤缓冲液，确保体系澄清。

吸光度变化不明显可能由于酶活性过低或底物浓度不足。增加酶液用量或延长反应时间，检查底物是否失效。重新配制新鲜的底物溶液，确保底物充足。

重现性差可能由于操作不规范或仪器不稳定。标准化操作流程，使用校准过的仪器，确保实验条件一致。进行重复实验，计算相对标准偏差评估重现性。